Fegato e Reni: protezione e supporto per due organi fondamentali

Ingestione, metabolismo ed escrezione.
Tre funzioni importanti eseguite da due organi fondamentali per la vita: reni e fegato.
I reni sono organi predisposti a svolgere diverse funzioni, alcune di queste comprendono la funzione ormonale attraverso la produzione di eritropoietina, renina e prostaglandine, assicurano l'eliminazione delle scorie azotate (provenienti dal metabolismo delle proteine) e l'eliminazione delle scorie da farmaci.
Il fegato è predisposto alla sintesi proteica tra cui, la produzione di proteine di trasporto (albumina, transferrina e lipoproteine), disintossicazione da tossine, metabolismo dei farmaci, metabolismo dei carboidrati e lipidi. Difatti, il fegato è un importante organi di sintesi, trasformazione, detossificazione e stoccaggio.
Esistono diversi modi di intaccare la salute di questi organi così importanti, per esempio attraverso l'eccessiva assunzione di sodio, introduzione di liquidi inferiore al 4% del peso corporeo, terapie farmacologiche croniche, alterazione dei cicli circadiani, stress, alimentazione povera di vegetali e fibre, malattie metaboliche scompensate, patologie infiammatorie croniche, patologie autoimmuni, disbiosi intestinale, overtraining, etc.

Come possiamo supportare questi due importanti organi?

Innanzitutto ridurre l'assunzione di alimenti ricchi in sale (NaCl), idratarsi adeguatamente, preferire alimenti ricchi in acqua, vitamine e sali minerali come vegetali e frutta, seguire un'alimentazione che segua i ritmi biologici circardiani.
In secondo luogo focalizzare l'attenzione sull'importanza della funzione dell'albumina, proteina appunto prodotta dal fegato, responsabile della pressione osmotica del plasma, del mantenimento dell'equilibrio acido-base (equilibrio compromesso nella maggior parte delle patologie o stati infiammatori), del trasporto (soprattutto ormonale) e di scavenger [27-29].
Per supportare questi organi si può agire con un'ottima strategia naturale sinergica usando, da un lato estratti che aiutano il fegato ed i reni ad assolvere meglio le proprie funzioni, dall'altro con un supplemento a base di albumina tamponata.

Autori: Dario Boschiero, Mariantonietta Lucafò - Data: 14/01/2020


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Bibliografia

  1. Reproduction is authorised provided the source is acknowledged. 22 May 2012 EMA/HMPC/113041/2010 Committee on Herbal Medicinal Products (HMPC). Westferry Circus, Canary Wharf. An agency of the European Union. European Medicines Agency, 2012
  2. Krylova SG, Efimova LA, Vymiatina ZK, Zueva EP. The effect of cichorium root extract on the morphofunctional state of liver in rats with carbon tetrachloride induced hepatitis model. Eksp Klin Farmakol. 69(6):34-6. 2006
  3. Hassan HA, Yousef MI. Ameliorating effect of chicory (Cichorium intybus L.)-supplemented diet against nitrosamine precursors induced liver injury and oxidative stress in male rats. Food Chem Toxicol. 48(8-9):2163-9. 2010
  4. Zafar R, Mujahid Ali S. Anti-hepatotoxic effects of root and root callus extracts of Cichorium intybus L. J Ethnopharmacol.63(3):227-31.1998
  5. Wang Q, Cui J. Zhongguo Zhong Yao Za Zhi. A review on pharmic effect of chicory research and development. Sep;34(17):2269-72. 2009
  6. Yasemin Sahan and Dilek Dulger. Antioxidant properties and their bioaccessibility of Blessed Thistle under different processed treatments. The FASEB Journal. 2013
  7. Bartram, T. Encyclopedia of Herbal Medicine, 1st edn., Grace Publishers, Bournemouth.1995
  8. Bolkent S, Yanardag R, Karabulut-Bulan O, Yesilyaprak B. J Ethnopharmacol. Protective role of Melissa officinalis L. extract on liver of hyperlipidemic rats: a morphological and biochemical study. 99(3):391-8. 2005
  9. Pérez-López FR, Haya J, Chedraui P. Vaccinium macrocarpon: an interesting option for women with recurrent urinary tract infections and other health benefits. J Obstet Gynaecol Res.;35(4):630-9. 2009
  10. Lavigne JP, Bourg G, Botto H, Sotto A. Cranberry (Vaccinium macrocarpon) and urinary tract infections: study model and review of literature. Pathol Biol (Paris).55(8-9):460-4. 2007
  11. Bukhari S. In vitro activity of vaccinium macrocarpon (cranberry) on urinary tract pathogens in uncomplicated urinary tract infection. J Ayub Med Coll Abbottabad. 27(3):660-3. 2015
  12. Rodríguez-Pérez C, Quirantes-Piné R, Uberos J, Jiménez-Sánchez C, Peña A, Segura-Carretero A. Antibacterial activity of isolated phenolic compounds from cranberry (Vaccinium macrocarpon) against Escherichia coli. Food Funct.;7(3):1564-73. doi: 10.1039/c5fo01441g. 2016
  13. Sun J, Marais JP, Khoo C, LaPlante K, Vejborg RM, Givskov M, Tolker-Nielsen T, Seeram NP, Rowley DC. Cranberry (Vaccinium macrocarpon) oligosaccharides decrease biofilm formation by uropathogenic Escherichia coli. J Funct Foods.17:235-242. 2015
  14. Carsten Gründemann, Karin Lengen, Barbara Sauer, Manuel Garcia-Käufer, Martin Zehl, and Roman Huber. Equisetum arvense (common horsetail) modulates the function of inflammatory immunocompetent cells. BMC Complement Altern Med.14: 283. 2014
  15. MedlinePlus. Us National Library of Medicine
  16. Gründemann C, Lengen K, Sauer B, Garcia-Käufer M, Zehl M, Huber R. Equisetum arvense (common horsetail) modulates the function of inflammatory immunocompetent cells. BMC Complement Altern Med.14:283. doi: 10.1186/1472-6882-14-283. 2014
  17. Taher YA. Antinociceptive activity of Mentha piperita leaf aqueous extract in mice. Libyan J Med.7. 2012
  18. Zhenliang Sun, Huiyan Wang, Jing Wang, Lianming Zhou, and Peiming Yang. Chemical Composition and Anti-Inflammatory, Cytotoxic and Antioxidant Activities of Essential Oil from Leaves of Mentha piperita Grown in China. PLoS One. 9(12): e114767. 2014
  19. Souravh Bais, Naresh Singh Gill, Nitan Rana, and Shandeep Shandil. A Phytopharmacological Review on a Medicinal Plant: Juniperus communis.Int Sch Res Notices. 634723. 2014
  20. Ameer OZ1, Salman IM, Asmawi MZ, Ibraheem ZO, Yam MF. Orthosiphon stamineus: traditional uses, phytochemistry, pharmacology, and toxicology. Med Food.(8):678-90. doi: 10.1089/jmf.2011.1973. 2012
  21. Yam MF, Asmawi MZ, Basir R. An investigation of the anti-inflammatory and analgesic effects of Orthosiphon stamineus leaf extract. J Med Food.11(2):362-8. 2008
  22. Alexander N. Shikov, Olga N. Pozharitskaya, Valery G. Makarov, Hildebert Wagner, Rob Verpoorte, Michael Heinrich. Medicinal Plants of the Russian Pharmacopoeia; their history and application.J Ethnopharmacol. 154(3):481-536. doi: 10.1016/j.jep.2014.04.007. 2014
  23. Bilal Chughtai, MD, Elizabeth Kavaler, MD, Richard Lee, MD, Alexis Te, MD, Steven A Kaplan, MD, and Franklin Lowe, MD. Use of Herbal Supplements for Overactive Bladder. Rev Urol.15(3): 93–96. 2013
  24. Hasan et al. Phaseolus Vulgaris linn.: botany, medicinal uses, phytochemistry and pharmacology.World journal of Pharmaceutica Research. Vol 5, Issue 11. 2016
  25. J. Labat-Robert, L. Robert. Aging of the extracellular matrix and its pathology. Experimental Gerontology Volume 23, Issue 1, Pages 5-18. 1988
  26. George L. Bakris, Alan J. Bank, David A. Kass, Joel M. Neutel, Richard A. Preston, Suzanne Oparil. Advanced glycation end-product cross - link breakers: A novel approach to cardiovascular pathologies related to the aging process. American Journal of Hypertension Volume 17, Issue 12, Supplement, Pages S23-S30. 2004
  27. Evans TW. Review article: albumin as a drug-biological effects of albumin unrelated to oncotic pressure. Aliment Pharmacol Ther.16 Suppl 5:6-11. 2002
  28. Basil T. Doumas, Theodore Peters Jr. Serum and urine albumin : a progress report on their measurement and clinical significance. Clinica Chimica Acta Volume 258, Issue1, Pages 3-20.1997
  29. Matthew King-Yan WONG, Man-Fai LAM, Yu-Hung LEUNG, Mona Man-Yu TSE, Sidney Chi-Fai TAM, Sing-Leung LUI, Wai-Kei LO Detection of microalbuminuria in non-insulin dependent diabetes mellitus (NIDDM) patients without overt proteinuria by a semiquantitative albumin -creatinine urine strips. Hong Kong Journal of Nephrology Volume 1, Issue1, Pages 18-22.1999